建立記錄各論文實驗條件的數據庫也可作為規避混亂的方法之一。一方面，隨著EV研究倍受世界矚目，各國啟動了大型研究項目。美國啟動NIH戰略性大型項目（ExtracellularRNACommunication），國際厲害性學會——Gordon和KeystoneSymposia也從2016開始成立會議小組。受到歐洲藥物研究開發公司“創新藥物倡議組織（IMI）”的支持推進的CANCER-ID項目，也包含EV研究在內。2017年日本選定了EV研究為文部科學省研究開發戰略的目標之一，期待會加速今后的研究發展。無論如何，今后EV研究的根本就是必須有強有力的研究方法和技術，而PS親和法有望成為其中之一。外泌體具有抗原提呈、免疫逃逸、誘導正常細胞轉化、促進瘤子發生和轉移等作用。外泌體mrna

外泌體（Exosome）介導瘤血管的形成和轉移。外泌體（Exosome）能將自身的細胞因子IL-8和VEGF釋放到細胞外，作用于內皮細胞膜表面受體，導致瘤血管快速形成并較終通過發生EMT過程促進瘤的遷移。瘤細胞來源的外泌體（Exosome）中含有血管生長素、血管內皮生長因子等，這些細胞因子以不同的作用方式促進瘤血管的形成，如VEGF通過喚醒磷酸酯酶C和第二信使的形成，誘導纖維蛋白溶解酶原活化物的表達，使得基底膜降解，從而促進瘤細胞的遷移。山東外泌體脂質組學外泌體產生相關的重要分子：Ral、ARF6、PLD2、RAB家族。

超速離心是外泌體提取較常用的方法也被認為是金標準，主要是根據外泌體的沉降系數、大小和形狀將其分離出來。首先4℃低速離心（300-500g，10min）去除死細胞以及細胞碎片，隨后以較高離心速度(2000xg，10min)去除生物聚合物以及凋亡小體，然后用10000xg,30min離心去除大型囊泡，結尾以超速離心沉淀外泌體。通過懸浮以及重復超速離心去除外泌體沉淀中的非外泌體蛋白。超速離心法具有操作簡單、不易被分離試劑污染、獲得的外泌體數量較多等優點。但是此方法需要昂貴的超高速離心機，每次處理的樣本量較小，費時，電鏡鑒定時還發現外泌體易聚集成塊，且上清中仍能檢測到大型囊泡，純度不高，另外高速離心會損傷外泌體影響下游實驗。

密度梯度離心法根據在蔗糖、碘海醇或碘克沙醇等惰性溶液中的浮力密度將外泌體分成特定的層，目前普遍應用的是蔗糖，這種方法可以成功地將亞細胞成分（例如過氧化物酶體，線粒體和核內體）分離到密度梯度溶液中的不同層中。樣品被放置在梯度的頂部，當施加離心力時，樣品中的顆粒以獨特的速率通過梯度，該梯度以從上到下的密度增加。樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集，隨后可以通過分餾收集，密度梯度超速離心對從蛋白質聚集體和非膜顆粒中分離出外泌體非常有效。此方法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣、費時且會造成外泌體損失。外泌體是指包含了復雜 RNA 和蛋白質的小膜泡 (30-150nm)。

外泌體的提取主要包括以下幾種方式：1、免疫磁珠法，這種方法可以保證外泌體形態的完整，特異性高、操作簡單、不需要昂貴的儀器設備，但是非中性pH和非生理性鹽濃度會影響外泌體生物活性，不便進行下一步的實驗。2、PS親和法，該方法將PS（磷脂酰絲氨酸）與磁珠結合，利用親和原理捕獲外泌體囊泡外的PS。該方法與免疫磁珠法相似，獲得的外泌體形態完整，純度較高。由于不使用變性劑，不影響外泌體的生物活性，外泌體可用于細胞共培養和體內注射。3、色譜法，這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一，但是需要特殊的設備，應用不普遍。外泌體作為核酸的藥物遞送載體。應用Tim4的外泌體強結合能力，可用ELISA或FACS高靈敏度定性檢測、定量分析外泌體。宇枚博

對外泌體的分析和檢測可以輔助疾病的早期診斷、療效評價和預后分析。外泌體mrna

DLS使用由于粒子的布朗運動而產生的波動散射光的強度來估計外泌體顆粒的大小分布及其zeta電位。DLS樣品制備方便，只需要簡單的過濾，測量速度較快，需要的樣品體積較少。但由于動態光散射技術是基于光強測量，散射光的強度與粒徑的六次方成正比，使得當測量多種粒徑的混合懸浮液時，通常會偏向于檢測較大粒徑產生的散射光，比較難檢測到較小顆粒。所以DLS不適合對粒徑分布較寬的外泌體樣本的測量，只適合尺寸較為均一的外泌體樣本，并且無法測量樣品中外泌體的濃度。外泌體mrna

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