原代細胞培養實驗室常規步驟為：1）將動物組織從機體中取出并消毒除去存留在組織上的細菌、細菌、等污染源，這些污染源將會所需培養的原代細胞凋亡、停止生長和繁殖直至死亡，因此整個原代細胞培養過程中較全在無菌狀態下進行。2）將組織塊在選定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分鐘，通常在37C水浴里進行，而蛋白酶的選定取決于部位組織和所需細胞的類型，比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出單個細胞，但是對于腦組織和乳腺等軟組織，就只能用分解能力較弱的膠原蛋白酶，以免損傷分散出來的單個細胞。確定一種特定細胞類型在低至無血清培養基中正常生長和功能所需的較低條件。合肥正規原代細胞分離試劑盒進貨價

取材的基本要求和注意事項敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養成功，取材時應盡量在4~6h內能制作成細胞，盡快入箱培養，若不能即時培養，應將組織浸泡于培養液內，于4℃存放。若組織塊較大，應在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結締組織后，切碎于培養液內4℃存放，但時間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應加入含10%二甲基亞砜的培養基，按細胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應嚴格無菌所取標本材料應在無菌條件下進行，為了確保無菌，對所取材料若疑有污染的可能，應將所取組織在含高濃。廈門天津原代細胞分離試劑盒應該添加額外的組織特異性因子，以防止成纖維細胞的生長。

原代細胞的獲取：1.培養時間無論是酶消化法還是組織塊法，取樣后培養時間較少需要一周以上的時間，期間可換液或者傳代。2.換液時間無論酶消化法還是組織塊法，在培養期間需要隨時關注細胞的生長狀況，需觀察其是否貼壁，是否污染，組織塊法要觀察是否有細胞遷移出來。正常情況下48~72h可換液一次。3.細胞狀態判斷正常貼壁細胞在培養幾天后，會逐漸貼滿整個瓶底或者皿底，有的呈纖維狀，有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代細胞圖（左：小鼠成纖維細胞；右：雞胚成纖維細胞；下：人成纖維細胞）。

原代細胞培養注意事項：原代內皮細胞提取：1)整個操作要在潔凈通風的超凈臺下進行，所有的器材要高壓消毒。2)根據BALB/c小鼠的體重，用10ml/kg3%濃度的戊巴比妥鈉麻醉；將小鼠置于盛有75%乙醇的燒杯內，這一步不僅可以消毒，也可以讓小鼠體毛浸濕，后續剃去皮毛的時候不會沾到剪刀或組織上。3)用鑷子輕輕挑起小鼠的心臟，裝有PBS的注射器插入心尖，同時在右心耳處剪開一個小口，緩慢推動注射器，隨著心臟的跳動，將體內的血液沖洗出來。4)取出小鼠的肺部組織，將肺組織切成小米粒樣的大小，置于預冷的HBSS中反復沖洗幾次。5)將小米粒大小的肺組織置于培養瓶中（培養瓶前現在用1%明膠溶液包被培養面，4度過夜，小鼠處理前，將培養瓶放置培養箱中，使其溫度恢復至37度），置于培養箱37度的環境下，消化4個小時。會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。

細胞凍存：通常我們不推薦重新凍存原代細胞，因為這可以促進細胞衰老和/或導致功能變化。原代細胞非常敏感，重新凍結可能導致細胞死亡或損傷。與細胞系不同，原代細胞增殖有限，我們建議盡早使用原代細胞進行實驗以防止遺傳漂移，如果你正在使用一個增殖困難的細胞類型，你應該密切監測細胞形態，因為少量混雜的細胞（如成纖維細胞）可能隨著時間的推移，大量生長從而成為主要細胞。正常的原代細胞培養，在無污染的情況下，建議培養基中不加抗體，抗體會影響細胞的某些基因變異從而導致實驗數據有差異，所以cellsystems的細胞在分離提取時就考慮到這點，他們不會采用任何抗體去分離和純化的同時，通過酶消化或者離心洗滌的方法讓細胞達到95%以上的純度，這樣得到的實驗數據更為準確體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。南京南昌原代細胞分離試劑盒

給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液。合肥正規原代細胞分離試劑盒進貨價

原代細胞的培養與建系細胞的來源多樣，培養方法也各不相同，凡是來源于胚胎、組織部位及外周血，經特殊分離方法制備而來的原初培養的細胞稱之為原代細胞。原代細胞經分散接種之手段稱為傳代。凡能經傳代方式進行再次培養的細胞稱為傳代細胞。若能穩定生長傳至10~20代以上的細胞可確立為細胞系。若有條件能開展單細胞克隆、純化，經大量擴增后所形成的生物學特性穩定的克隆化細胞群，稱之為細胞株或克隆細胞。此過程稱為細胞的純化或細胞克隆。這些基本技術是從事細胞培養工作的基礎，只有熟悉和掌握了基本技術,才可能更快捷地學習和掌握其他方法,本章重點敘述常用的基本技術。靠前節原代細胞的取材人和動物細胞的取材是原代細胞培養成功的首要條件，是進行細胞培養的靠前步，若取材不當，將會直接影響細胞的體外培養。合肥正規原代細胞分離試劑盒進貨價