原代細胞標準化培養：由于每種原代細胞培養的條件迥異，而且每個實驗室都摸索出自己的培養條件，而對于一個特定的組織塊，所用培養條件不一樣，得出的所需細胞族群就不一樣，因為每種組織塊都含有不同種類的細胞群，而每一種細胞群在所選定的培養條件下（比如所選蛋白分解酶的種類和條件，細胞因子的種類，基礎培養基的種類或者是培養時間長短）都會得出不同的結果。由于各實驗室采取不同的培養條件，即使是同一塊心組織就有可能造成A實驗室獲得30%的心肌細胞，70%其他種類細胞，而B實驗室卻能獲得70%所需心肌細胞，30%為成纖維、脂肪等種類。這樣的話，即使是做同一項目的實驗，就有可能得出相反的科學結論。待細胞貼壁后，再補足培養液繼續培養。廈門正規原代細胞分離試劑盒供應商

保存條件：-20℃保存，一年有效。其中臺盼藍染色液也可以4℃保存，PMSF(晶體)和PMSF(溶劑)在配制成100mMPMSF溶液前可以室溫保存。注意事項：1.試劑盒中的試劑對于不同的實驗目的不必全部使用。2.如果不是用于制備線粒體蛋白樣品，線粒體分離試劑和線粒體裂解液中不必加入PMSF。3.如果用于制備線粒體蛋白樣品，線粒體分離試劑和線粒體裂解液中需添加PMSF。PMSF一定要在線粒體分離試劑或線粒體裂解液加入到樣品中前4.2-3分鐘內加入，以免PMSF在水溶液中很快失效。5.分離線粒體的所有步驟均需在冰上或4℃進行，所用溶液需冰浴或4℃預冷。6.通常在分離線粒體時前后兩次離心速度選取600g和11,000g，如果希望純度更高，但對線粒體的得率要求不高，前后兩次離心速度可以采用1000g和3500g南京石家莊原代細胞分離試劑盒應用于大規模藥物篩選，越來越多地用于更可靠地研究生命科學。

原代細胞的培養：原代細胞的培養是指直接從機體取下細胞、組織和部位后立即進行培養。因此，較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養，此時的細胞保持原有細胞的基本性質，如果是正常細胞，仍然保留二倍體數。但實際上，通常把靠前代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。較常用的原代細胞的培養有組織塊培養和分散細胞培養。組織塊培養是將剪碎的組織塊直接移植在培養瓶壁上，加入培養基后進行培養。分散細胞培養大致步驟為：將動物組織從機體中取出離散成單個細胞(常用胰蛋白酶)，置合適的培養基中培養，使細胞得以生存、生長和繁殖(注意整個過程無菌)。

膠原酶的配制：建議看相關的文獻進行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內預熱（注意現用現配）。胰酶（酶聯合法獲取原代細胞中會加入胰酶，相關文章也蠻多的）膠原酶消化時間：根據組織特性，消化時間會有差異。以小鼠腎細胞為例，加入膠原酶Ⅰ進行消化后，放入37℃培養箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細小，時間可以短一些，30min左右即可）。原代細胞的獲取：酶消化法：所用試劑：膠原酶和胰酶。確定一種特定細胞類型在低至無血清培養基中正常生長和功能所需的較低條件。

原代細胞的獲取：1.培養時間無論是酶消化法還是組織塊法，取樣后培養時間較少需要一周以上的時間，期間可換液或者傳代。2.換液時間無論酶消化法還是組織塊法，在培養期間需要隨時關注細胞的生長狀況，需觀察其是否貼壁，是否污染，組織塊法要觀察是否有細胞遷移出來。正常情況下48~72h可換液一次。3.細胞狀態判斷正常貼壁細胞在培養幾天后，會逐漸貼滿整個瓶底或者皿底，有的呈纖維狀，有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代細胞圖（左：小鼠成纖維細胞；右：雞胚成纖維細胞；下：人成纖維細胞）。培養時間無論是酶消化法還是組織塊法。杭州正規原代細胞分離試劑盒

原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，它們之間會互相影響。廈門正規原代細胞分離試劑盒供應商

使用RFect系列小核酸轉染試劑做siRNA/miRNA轉染測實驗注意事項：1.細胞接種：一般做轉染前現在接種/鋪板（細胞計數大約5*10^4cell/ml），使做轉染前細胞密度在30-50%；如果細胞是原代細胞，接種密度可以密一些，細胞計數在2*10^6cell/ml；懸浮細胞可以在轉染當天接種/鋪板（細胞計數大約5*10^4cell/ml），待細胞狀態穩定后做轉染前細胞密度30-40%。2.為了能在使用時有較好的轉染效果，靠前次使用建議您用24孔板做，每孔2ul轉染試劑即可。將較佳轉染條件（siRNA與轉染試劑的用量、比例）放大到對應的孔板即可廈門正規原代細胞分離試劑盒供應商