無血清細胞凍存液的用途：無血清細胞凍存液，含多種保護劑成分。一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞，同時另一些保護劑不能穿透細胞，但可以在冰晶形成之前，優先結合細胞外的水分子，降低細胞外溶液的電解質濃度，減少陽離子進入細胞的數量，為多種保護劑組合，在細胞內外進行雙重保護，較大提高了細胞復蘇存活率。無血清細胞凍存液不含牛血清，無動物源組份。2-8℃即可穩定保存，無需冷凍，即取即用。凍存細胞，無需程序降溫。凍存細胞復蘇率在90%以上。當溫度達-25℃以下時，可增至-5 ℃～-10℃/min。之前。南京唐山無血清細胞凍存液

細胞凍存注意事項：1、細胞貼壁少的問題：教科書中說明凍存細胞解凍時1ml細胞液要加10ml－15m培養液，而在我的試驗中的經驗總結為培養基越少細胞越容易貼附。2、復蘇細胞分裝的問題：試驗中我的經驗總結為復蘇1管細胞一般可分裝到1-2只培養瓶中，分裝過多，細胞濃度過低，不利于細胞的貼壁。3、加培養基的量放入問題：這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度，從如果你加培養基的太少，那么DMSO的濃度就會比較大，就會影響細胞生長，從以前的資料來看，DMSO的濃度在小于0.5%的時候對一般細胞沒有什么影響，還有一個說法是1％。所以如果你的凍存液的濃度是10％DMSO的話那么加10ml以上的培養基就恰好稀釋到了無害濃度溫州昆明無血清細胞凍存液在細胞培養中，細胞凍存是較關鍵環節之一。

細胞凍存和復蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑，會導致細胞內冰晶的產生，從而使細胞產生內源性的機械損傷，引起細胞內環境滲透壓，PH，電解質等的改變，進而促使細胞死亡。在過去的幾十年中，科研工作者將培養基、血清和DMSO按照一定的比例配制成凍存液，并配合手工使細胞從4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步轉移使其達到“慢凍”的效果。但這種自制的凍存液儲存時間一般比較短，不能滿足時間跨度大的實驗項目的需求。且這樣人力和時間成本大，人手操作的誤差和血清制品的批間差也給實驗結果帶來了不穩定性。

細胞凍存的注意事項：1、各種細胞對凍存速度的要求也不一樣；上皮細胞和成纖維細胞耐受性可能大些，骨髓干細胞－2~－3℃/分鐘合適；胚胎細胞耐受性較小，不宜太快。總之在一開始時，下降速度不能超過－10℃/分鐘。2、用什么防護劑合適和用量多大，要依細胞而定，初代培養細胞用DMSO較好，一般細胞可用甘油；用量以較小為好。有人認為人皮膚上皮細胞貯存在20%-30%甘油中很好。3、原則上細胞在液氮中可貯存多年，但為妥善起見，凍存一年后，應再復蘇培養一次，然后再繼續凍存。4、將凍存管放入液氮容器或從中取出時，要做好防護工作，以免凍壞。5、注意自身的安全，對于來自人源性或病毒傳染的細胞株應特別小心。操作過程中，應避免引起氣溶膠的產生，小心有毒性試劑例如DMSO，并避免尖銳物品傷人等。無血清細胞凍存液的優勢：含DMSO、糖類、氨基酸等成分的一款通用型細胞凍存液。

細胞凍存步驟說明：配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;取對數生長期的細胞，去除舊培養液，用PBS清洗。去除PBS，加入適量胰蛋白酶(覆蓋培養皿表面)把單層生長的細胞消化下來;離心1000rpm，5min;去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節存液中細胞的較終密度為5×106/ml~1×107/ml;將細胞分裝入凍存管中，每管1~1.5ml;在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者;凍存:標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min;當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內。無血清凍存液用途：無血清細胞凍存液用于免疫細胞及干細胞的存儲。珠海無血清細胞凍存液單價

無血清細胞凍存液不含牛血清，無動物源組份。南京唐山無血清細胞凍存液

細胞凍存液常見問題：1.從繁衍期到產生高密度的單層細胞之前的塑造體細胞都能夠用以凍存，但較好是為多數成長期體細胞。在凍存前一日較好是換一次細胞培養液;2.將凍存管放進液氮容器或從這當中取下時，要搞好安全防護工作中，以防凍壞;3.凍存和再生較好用新配置的細胞培養液。細胞凍存的基本原理：細胞代謝過程需要各種蛋白酶的參與，而這些蛋白酶在環境溫度低于-70℃時會集體不工作，低溫貯藏的目的是通過較低溫使細胞代謝活動近乎停止。細胞因此進入休眠狀態，使細胞“不會老”，所以可以長期保存。因為凍融過程對所有細胞和組織都是有一定傷害的，因此，需要開發出有效的技術來防止細胞死亡和損傷。南京唐山無血清細胞凍存液