細胞轉染為什么不能加血清：傳統(tǒng)的轉染試劑一般會增加細胞的通透性，這樣會把血清中的成分帶入細胞，造成細胞毒性。陽離子脂質體，轉染的過程是帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物被細胞內吞。血清中含有大量的蛋白質，在轉染過程中，帶負電的蛋白質可能干擾陽離子脂質體對核酸的吸附，影響轉染效率。同時，也會將血清中的蛋白帶入細胞，引發(fā)細胞毒性，故不能有血清轉染。這些轉染試劑要求在轉染前換無血清培養(yǎng)基，轉染后4-6h在更換成有血清培養(yǎng)基，這其實是為了減輕轉染造成的細胞毒性和轉染效率的降低。瞬時表達分析檢測未重組質粒DNA上基因的表達。杭州廣州細胞高效轉染試劑

大多數(shù)已建立的細胞系都是非整倍體，原代培養(yǎng)包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變，總染色體重組或基因調控變化等而演化，這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化，融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉染活性。比如，新鮮融化的NIH3T3細胞比傳代8次的細胞表現(xiàn)出更高的轉染效率，融化細胞的進一步傳代并沒有降低轉染效率。因此，如果觀察到轉染效率降低，可以試著轉染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結果。珠海細胞高效轉染試劑直銷廠家轉化、轉染、轉導幾個名詞是從事生命科學研究的初學者經(jīng)常碰到的。

細胞轉染方法：1.脂質體轉染法陽離子脂質體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用，將DNA分子包裹入內，形成DNA脂復合物，也能被表面帶負電的細胞膜吸附，再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中，是目前實驗室較方便的轉染方法之一，其轉染率較高，優(yōu)于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性，所以轉染時間一般不超過24小時。常用細胞類型：cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.電穿孔轉染法電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內，這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。一般情況下，高電場強度會殺死50%-70%的細胞。現(xiàn)在針對細胞死亡開發(fā)出了一種電轉保護劑，可以較大的降低細胞的死亡率，同時提高電穿孔轉染效率。

轉染的注意事項：細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據(jù)不同的細胞類型或應用而異。一般轉染時，貼壁細胞密度為70%-90%，懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉染效率對細胞密度很敏感，所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數(shù)目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的，CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應增加了。這些結果說明，對于轉染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質體試劑的量會因細胞密度而異。瞬時轉染的細胞中，外源基因得以表達但它們并不會整合到細胞的基因組中。

轉染的注意事項：用于蛋白生產的細胞的轉染可以在添加有血清或無血清培養(yǎng)基中進行。但更傾向于使用無血清培養(yǎng)基表達蛋白，因為血清蛋白會干擾下游表達蛋白的純化。無血清培養(yǎng)基一般針對某一特定細胞類型優(yōu)化并有幾類無血清培養(yǎng)基不需要添加血清，一般含有不均一的或大量的蛋白（但比添加血清的培養(yǎng)基低得多）。無蛋白培養(yǎng)基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物，限定化學成分的培養(yǎng)基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應用的一種。在含血清時轉染的細胞可以適應無血清培養(yǎng)基，無蛋白培養(yǎng)基或限定化學成分的培養(yǎng)基。在部分情況下（如293-F，293-H，COS-7和CHO-S），對于已適應無血清或無蛋白培養(yǎng)基的細胞，可以使用其培養(yǎng)基進行轉染。其他一些無血清培養(yǎng)基包含克制陰離子脂質體介導轉染的成分，在這些情況下，有必要在諸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培養(yǎng)基中進行培養(yǎng)和轉染選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細胞進行轉染。廈門長沙細胞高效轉染試劑

*有一部分轉入細胞的DNA被轉運到細胞核內進行轉錄并較終輸出mRNA到細胞質進行蛋白合成。杭州廣州細胞高效轉染試劑

細胞轉染那些事兒：1.設置陰性和陽性對照：一般在轉染后24-48h,靶基因即在細胞內表達?？梢罁?jù)不同的實驗目的，24-48h后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。2.轉染后效率的檢測方法：觀察轉染后細胞熒光情況；qPCR驗證；WB檢測敲減或過表達蛋白。3.轉染效率低，可采取以下兩種方法：1)復轉染，即轉染后12-24h再進行轉染，前提是該細胞對脂質體的耐受性較好，轉染后細胞死亡數(shù)較少。2)通過藥篩來殺死未轉入成功的細胞，前提是該質粒帶有物品抗性的基因。4.電轉時，不同的細胞需要的電壓是不一樣的，需要做預實驗，摸索較佳條件。對于大多數(shù)細胞而言，較佳電壓位于250-1250v/cm。電擊后，應該將DNA和細胞混合液在室溫下放置10min,使細胞恢復損傷。杭州廣州細胞高效轉染試劑