原代細胞的培養是指直接從機體取下細胞、組織和部位后立即進行培養。因此,較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養,此時的細胞保持原有細胞的基本性質,如果是正常細胞,仍然保留二倍體數。原代細胞在培養的過程中,也可能產生基因突變而形成無限傳代的細胞株,傳代次數越多,就越有可能變成細胞株(基因缺陷型),因此科學界也通常把靠前代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。較常用的原代細胞的培養有組織塊培養和分散細胞培養。組織塊培養是將剪碎的組織塊直接移植在培養瓶壁上,加入培養基后進行培養。永生化細胞系通常具有更快的倍增時間并可持續地分裂。蘇州原代細胞分離試劑盒廠家直銷

原代細胞培養:組織材料若來自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料,較簡單的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘,若懸液量大,可適當延長離心時間,但速度不能太高,延時也不能太長,以避免擠壓或機械損傷細胞,離心沉淀用無鈣、鎂PBS洗兩次,用培養基洗一次后,調整適當細胞濃度后再分瓶培養,若選用懸液中某些細胞,常采用離心后的細胞分層液,因為,經離心后由于各種細胞的比重不同可在分層液中形成不同層,這樣可根據需要收獲目的細胞。金華原代細胞分離試劑盒廠家現貨應該添加額外的組織特異性因子,以防止成纖維細胞的生長。

膠原酶的配制:建議看相關的文獻進行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進行配制,配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內預熱(注意現用現配)。胰酶(酶聯合法獲取原代細胞中會加入胰酶,相關文章也蠻多的)膠原酶消化時間:根據組織特性,消化時間會有差異。以小鼠腎細胞為例,加入膠原酶Ⅰ進行消化后,放入37℃培養箱中消化45min~1h左右,期間每10min中震蕩一次,知道組織塊幾乎完全消失為止(若是組織塊剪得非常細小,時間可以短一些,30min左右即可)。原代細胞的獲取:酶消化法:所用試劑:膠原酶和胰酶。
原代細胞培養注意事項:1.收到細胞時,要鏡下觀察是否有污染情況;收到細胞的前幾天,要做好各種倍數的鏡下拍照記錄,以防細胞出現問題后,可以跟公司很好地溝通。2.收到細胞后,不要馬上處理。應置于培養箱中靜置4h以上再操作。如果不著急,可靜置過夜。3.細胞的靠前次傳代,一定要密度高一些傳代,原代細胞傳代密度低,很難長起來。建議1:2-1:3傳代。4.原代細胞傳代時(內皮細胞,貼壁為例),0.25%+0.53nM的胰酶消化,1ml消化液37度培養箱內消化30sec,再加入5ml培養基(正常消化貼壁細胞,我們使用胰酶和培養基的量是1:1,但是原代細胞必須用大量培養基中和胰酶)。5.原代細胞不建議凍存,因為凍存很容易復活不成功。如果要凍存的話,建議在P2或P3代凍存,凍存液中的血清越多越好,建議比例9(血清):1(DMSO)。6.原代細胞復蘇時,置于37-38度水浴融化細胞,并加入10ml培養液(正常貼壁細胞復蘇時,也可以使用這種比例,復蘇成活率會較大提高),離心重懸鋪板。要避免經常翻動和振動,否則組織塊不易附著于瓶壁上或附著后也會脫落飄起。

原代細胞轉染操作步驟(以24孔培養板為例):A.細胞接種:轉染前現在接種細胞,每孔500μl培養基(不可加物品),使細胞在轉染時密度在30-50%。B.siRNA-RFectPM混合物準備:1.6pmolsiRNA用50μl無血清培養基稀釋。2.2μlRFectPM用50μl無血清培養基稀釋。輕輕混勻,室溫孵育5min。注意:確保在25min內執行第三步操作,不要過于延遲。3.孵育5min后,將siRNA稀釋液與RFectPM稀釋液混合(總體積100μl)。輕輕混勻,室溫孵育20min。C.將混合物加到培養的細胞內(完全培養基培養):1.將100μl混合物加入培養孔內,培養孔內含有0.5ml培養的細胞。輕輕晃動培養板,混勻。2.37°C培養18-72h,檢測基因克制效果。如果需要,細胞培養4-6h時可以更換培養基,但不是必須。孵育時間的長短,取決于細胞類型、所干擾基因本身及分析方法。可設置不同的孵育時間進行實驗以確定較佳孵育時間。轉染實驗優化:為了提高轉染效率,較好對轉染條件進行優化,特別是開始使用。原代細胞是出了名的難養,對培養環境和實驗操作的要求更苛刻。南京深圳原代細胞分離試劑盒
細胞培養過程中,多久更換一次培養基這取決于細胞生長的速度。蘇州原代細胞分離試劑盒廠家直銷
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