時間分辨熒光共振能量轉移(TR-FRET)是FRET技術的升級版,它結合了FRET的高空間分辨率和時間分辨熒光(TRF)的長壽命信號優勢。TR-FRET使用鑭系元素螯合物(如銪Eu3+、鋱Tb3+)作為供體。這類供體具有熒光壽命極長(微秒至毫秒級)的特點。檢測時,使用脈沖光源激發后,在短暫延遲后(例如50-100微秒)再測量熒光,此時普通背景熒光(壽命只納秒級)已完全衰減,而長壽命的供體熒光及其通過FRET轉移產生的受體熒光(通常使用別藻藍蛋白APC或d2等作為受體)則被特異性檢測到。這一設計幾乎完全消除了樣本基質、微孔板及試劑本身的短壽命背景熒光干擾,將檢測的信噪比和靈敏度提升至新的高度,特別適用于復雜生物樣本(如血清、細胞裂解液)的直接檢測。醫療新時代!均相發光,助力疾病早篩早診!江蘇CRET技術均相發光免疫診斷試劑

激酶是重要的藥物靶點,其活性檢測是藥物篩選的關鍵。均相發光技術,尤其是TR-FRET和Alpha技術,為此提供了理想平臺。以TR-FRET為例:將待測激酶、底物肽、ATP與待篩選化合物共同孵育。體系中包含兩種抗體,一種針對磷酸化底物(帶供體標記),另一種針對底物肽的標簽(帶受體標記)。只有當激酶活性正常,底物被磷酸化后,兩個抗體才能同時結合到底物肽上,使供受體靠近產生FRET信號。若化合物能抑制激酶,則磷酸化水平下降,FRET信號減弱。這種方法無需分離,可直接在含有ATP、激酶和化合物的混合液中實時或終點法檢測,通量極高,是發現激酶抑制劑的主流手段。山東化學發光均相發光與普通發光的區別告別磁珠反應,均相化學發光,操作更簡便,實驗效率大幅提升!

從原理上深度對比均相與異相免疫分析,能清晰揭示均相技術的革新之處。異相分析法,以經典的酶聯免疫吸附試驗(ELISA)為表示,其檢測依賴于將捕獲抗體固定在固相載體(如微孔板)上,通過反復洗滌來分離“特異性結合”與“游離”的標記物,比較終通過底物顯色或發光來定量。這個過程繁瑣、耗時,且洗滌步驟容易導致結合物損失。而均相免疫分析則讓所有反應組分在溶液存。通過物理化學手段,使得只有當目標分子正確結合,形成特定復合物時,才能產生或改變發光信號。例如,在臨近誘導技術中,只有兩個標記有供體和受體的抗體同時結合一個抗原分子并彼此靠近時,能量轉移才能發生,從而報告陽性信號。所有未結合的標記物因其距離遠,不產生有效信號,故無需分離。
在分子診斷領域,均相發光技術的應用遠不止于基礎的實時熒光定量PCR(qPCR)。它正推動該領域向著更高靈敏度、更強特異性和更便捷的操作模式演進。例如,在數字PCR(dPCR)這一定量技術中,雖然目前主流依賴熒光檢測,但基于化學發光的均相檢測方案正在探索中。其設想是將PCR反應體系分割成數萬個微滴后,利用化學發光探針(如基于魯米諾或吖啶酯的體系)進行檢測:在擴增陽性微滴中,探針被切割或構象改變觸發化學發光反應,通過計數發光的微滴數目即可實現核酸分子的定量。這種方法可能免除對復雜激發光學系統的依賴,并有望利用某些化學發光體系更高的信噪比特性,進一步提升對極低豐度靶標的檢出能力。均相化學發光,為您提供更優解決方案!

研究細胞內信號通路的動態變化,需要能在細胞裂解液甚至活細胞背景下進行快速、多通路的分析。均相化學發光技術完美契合這一需求。例如,使用基于Alpha或類似技術的磷酸化特異性免疫檢測,可以在同一塊板中,從細胞裂解液中直接定量多種信號蛋白(如Akt、ERK、STAT)在不同刺激條件下的磷酸化水平。整個過程無需Western Blot的凝膠電泳、轉膜和繁瑣的封閉孵育洗滌步驟,通量提高數百倍,且能實現精確定量。此外,基于化學發光的報告基因檢測(如熒光素酶)也被普遍用于監測特定信號通路(如Wnt、Hedgehog、NF-κB)的轉錄活性,用于功能性篩選和機理研究。均相化學發光在體外診斷領域的應用范圍有多廣?江蘇CRET技術均相發光免疫診斷試劑
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熱遷移分析(Cellular Thermal Shift Assay, CETSA)是一種研究靶點與藥物在細胞水平結合情況的技術。其原理是藥物結合會改變靶蛋白的熱穩定性。傳統的CETSA依賴蛋白質印跡法檢測,通量低。現在,通過與均相發光免疫檢測(如Alpha)結合,開發出了均相CETSA(簡稱CETSA® HT)。該方法將細胞在不同溫度下加熱后裂解,使用針對目標蛋白的抗體對(偶聯Alpha供體/受體珠)檢測溶液中剩余的未聚集的天然蛋白量。通過比較藥物處理組與對照組的蛋白熱穩定性曲線偏移,即可高通量地確認化合物是否與細胞內靶點結合,并評估結合強度。江蘇CRET技術均相發光免疫診斷試劑