廣東疫苗內毒素檢測結果判定
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發布時間:2025-10-06
內毒素檢測鱟試劑的反應受pH的干擾。在進行檢測時,要調節被測溶液的pH值,使鱟試劑與供試品溶液的混合溶液pH值落在鱟試劑指定的使用pH范圍內(一般鱟試劑作用pH值在6.0~8.0范圍內)。用于調節pH值的試液或溶液(酸或堿),可采用BET用水配制,并將溶液在無熱原容器中儲存;必須對試液或溶液進行驗證,以證明不含可檢出的內毒素并且無干擾因素。調節pH試劑(酸或堿)的添加量,不應該超過供試品的1092。如果超過10%,則在進行計算時,將DH試劑的添加量的系數計算進去。
內毒素檢測的方法多樣性、多影響因素及實驗干擾,會導致自檢數據與廠家數據存在差異。廣東疫苗內毒素檢測結果判定
當實驗室更換內毒素檢測方法或更換試劑供應商時,需進行方法比對與橋接驗證。比對實驗需選取至少 3批代表性樣品,分別用新舊方法檢測,計算結果相關性(如相關系數 R2≥0.95)和偏差(≤20%)。橋接驗證還需評估新方法的特異性、靈敏度是否與舊方法一致,如確認對高風險樣品(如含 β- 葡聚糖的樣品)的抗干擾能力相當。若方法變更涉及法規申報產品,需將驗證數據納入申報資料,證明變更后方法仍能有效控制內毒素風險,符合 FDA、NMPA 等監管機構對方法變更的合規性要求。
浙江抗體藥物內毒素檢測LER現象重組級聯試劑(rCR)無動物源,不含 G 因子,可避免 β- 葡聚糖致內毒素檢測假陽性。
低內毒素回收(LER)與傳統鱟試劑干擾(抑制 / 增強)在多維度存在差異,準確區分對優化內毒素檢測至關重要。表現上,LER 是內毒素回收率<50%,傳統干擾是反應抑制或增強;成因上,LER 由螯合劑 + 表面活性劑協同或蛋白質電荷結合引發,傳統干擾因 pH、β- 葡聚糖等導致;排除方式上,LER 時間依賴且無法稀釋解決,傳統干擾濃度依賴且可通過稀釋緩解;確認方法上,LER 需通過保存時間研究(HTS),傳統干擾按藥典干擾實驗評估。明確這些區別能幫助企業排查內毒素檢測異常,避免誤將 LER 當作普通干擾處理。
動態顯色法鱟試劑是湖州申科生物針對生產過程監控開發的內毒素檢測工具,兼具準確性和便利性。該試劑靈敏度達 0.005-5EU/mL,標準曲線 R2≥0.990,可準確定量內毒素濃度,滿足生物制品中間品和成品的放行需求。成套包裝設計包含內毒素標準品、檢查用水、主試劑復溶液、主反應試劑、96 孔板及封口膜,無需額外采購輔料,開箱即可使用,減少耗材浪費。穩定性上,批次間 CV 值≤15%,優于行業 20% 的平均水平,確保長期檢測數據的一致性。配套抗增液可有效應對蛋白質、多糖等基質干擾,加標回收率穩定在 80%-120%。操作上適配主流酶標儀,支持 405nm 動態讀數,數據可自動記錄追溯,符合 GMP 數據完整性要求。
細菌內毒素試驗(BET)是用鱟變形細胞裂解物(LAL)測內毒素的體外方法,LAL 測試獲國際藥典推薦。
隨著動物保護理念和法規要求升級,重組因子C法(rFC法)作為 LAL 法的替代技術逐漸普及。重組 C 因子是以基因重組的方式表達的 LAL 試劑中的 C 因子,C 因子被內毒素活化后切割熒光底物產生游離熒光基團,通過檢測熒光信號可以反應活化后的蛋白酶活性,并由此可以推算出內毒素的含量。與傳統 LAL 法相比,rFC 法無需依賴鱟血資源,避免了天然 LAL 試劑批間差異大、易受 β- 葡聚糖干擾等問題,且反應特異性更強。目前,《美國藥典》、《歐洲藥典》等法規已收錄 rFC 法,歐盟更推薦其用于疫苗等高風險產品檢測,在保證檢測準確性的同時,符合動物福利和可持續發展要求。
細菌內毒素檢查法用鱟試劑檢測或量化革蘭陰性菌內毒素,判斷供試品限量是否合規。廣東生物制品內毒素檢測常見問題分析
鱟試劑含多種酶和輔助因子,批次間活性差異可能導致內毒素檢測結果變異性。廣東疫苗內毒素檢測結果判定
內毒素檢測方法驗證需覆蓋多項參數,確保方法可靠:線性范圍需包含樣品預期濃度(如 0.01-10 EU/mL),相關系數 R2≥0.98;準確度通過加標回收率評估,應在 50%-200% 范圍內;精密度包括批內和批間精密度,CV 值均應≤15%;檢測限(LOD)需低于產品限值的 1/2(如限值 0.5 EU/mL,LOD 應≤0.25 EU/mL);專屬性需證明無干擾物質影響(如 β- 葡聚糖、蛋白質不引發假陽性)。驗證通過后,方法需經實驗室負責人批準方可使用,且定期需進行一次回顧性驗證,確認方法持續有效。
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