上海醫療器械熱原檢測方法驗證

來源：發布時間：2025-10-06

在 MAT 熱原檢測中，單核細胞系與 PBMC（外周血單個核細胞）的檢測結果穩定性差異明顯。實驗結果數據顯示，單核細胞系的標曲 R2 達 1.000，各濃度點 CV 值極低（如 ST1 為 0.92%、ST2 為 1.5%），相對偏差均在 5% 以內；而 PBMC 的標曲 R2 為 0.997，部分濃度點 CV 值超 20%（如 ST2 為 39.6%、ST6 為 45.5%），相對偏差高達 171.43%。這種差異源于兩者對熱原反應的一致性—單核細胞系能穩定釋放 IL-6，PBMC 則因供體差異導致 IL-6 釋放水平波動，直接影響熱原檢測結果的重復性，單核細胞系更適配準確的熱原定量需求。

中國藥典9301已將MAT列為熱原檢測的補充方法，美國藥典鼓勵企業采用經過驗證的MAT替代家兔法。上海醫療器械熱原檢測方法驗證

中國藥典對 MAT 法熱原檢測要求 4 復孔，未明確 CV 限值，需結合細胞實驗特性合理解讀與操作。藥典不設 CV 限值的主要原因是：MAT 法基于細胞反應，細胞活性易受環境微小變化（如溫度、pH）影響，存在天然不穩定性，過嚴的 CV 要求可能脫離實際；但實驗室可通過積累多批次數據，制定內部 CV 控制范圍（如定量上下限 CV≤30%、25%），確保檢測重復性。關于 3 復孔的適用性：若長期數據顯示 CV 控制良好（如連續 10 批次 CV<20%），且樣品為中間過程檢測（非 QC 放行），可嘗試 3 復孔，但需同步設置加標對照，驗證結果可靠性；若為 QC 放行檢測，仍建議按 4 復孔操作，符合藥典下限要求。對于異常點處理，可采用狄克遜準則（Q 檢驗）等統計學方法 —— 如某復孔 IL-6 檢測值偏離平均值 30% 以上，且無明顯操作誤差（如加樣錯誤），可判定為異常點并剔除，但需在原始記錄中詳細說明原因，確保數據可追溯，避免隨意剔除導致結果失真。

北京高效熱原檢測技術服務歐洲藥典已正式廢除家兔法熱原檢測，推薦單核細胞活化反應試驗（MAT）為合適的替代方案。

單核細胞系憑借標準化、可控性等優勢，有效解決PBMC（外周血單個核細胞）在熱原檢測中的局限。其一，單核細胞系源自永生化細胞株（如 Mono-Mac-6），經篩選后細胞特性高度均一，消除供體差異，讓熱原檢測結果穩定性大幅提升。其二，其培養過程可控，培養基配方與環境（溫度、CO?濃度）可準確調控，能維持細胞好的活性，避免 PBMC 因分選、凍存導致的活性衰減。其三，對培養環境波動耐受性更強，可保障細胞遺傳穩定且無污染物風險，降低熱原檢測的操作復雜度與誤差率。

MAT法熱原檢測特定標準品與傳統細菌內毒素國家標準品存在本質差異，需明確區分以保障檢測準確性。MAT 特定標準品為大腸桿菌（E.coli 0113:H10:K）菌株制備，經全國 5 家藥品檢驗所（含中檢院）用凝膠法、動態濁度法及動態顯色法協作標定，溯源至國際標準品，可同時檢測內毒素與非內毒素熱原；而傳統細菌內毒素國家標準品（如 9000EU 規格）源自大腸桿菌（E.coli O111:B4），只適用于內毒素檢測，無法識別非內毒素熱原。關鍵驗證數據顯示，用 MAT法檢測 9000EU 內毒素標準品時，加標回收率不在 50%-200% 的合格范圍，因此不能替代 MAT 特定標準品。值得注意的是，盡管 MAT 試劑盒用內毒素標準品繪制標曲，但經驗證其可識別非內毒素熱原—若樣品中存在非內毒素熱原（如革蘭氏陽性菌的脂磷壁酸），會觸發細胞陽性反應，有效避免漏檢，這也是 MAT 法在熱原防控中優于單一內毒素檢測的關鍵優勢。

MAT 法通過熱原活化單核細胞 TLR 受體，釋放 IL-6 等細胞因子，ELISA 檢測 IL-6 推算熱原含量。

MAT法（單核細胞活化反應測定）熱原檢測基于人體免疫反應機制設計，原理是：內毒素（革蘭氏陰性菌來源）與非內毒素熱原（革蘭氏陽性菌、霉菌、病毒等來源）進入人體后，會活化單核細胞或單核細胞系，使其釋放 IL-6、IL-1、IL-1β、TNF-α 等促炎細胞因子。檢測時將供試品與單核細胞 / 單核細胞系共孵育，再通過 ELISA 定量檢測釋放的 IL-6 含量，結合內毒素標準品繪制的標曲，即可判斷供試品中熱原含量是否符合規定，實現內毒素與非內毒素熱原的全覆蓋檢測。

熱原檢測MAT零動物消耗，降低檢測成本，提升檢測效率和倫理水平。江蘇熱原檢測方法驗證

熱原檢測歷經動物整體試驗、體外生化反應到細胞免疫應答的三階段演進，靈敏度與效率不斷提升。上海醫療器械熱原檢測方法驗證

MAT法熱原檢測中，樣品與細胞共培養時長需嚴格控制，以保障炎癥因子分泌量穩定。說明書要求共培養 24 小時，雖未明確允差，但實驗驗證顯示，±30 分鐘的允差對結果無明顯影響 —— 細胞因子（如 IL-6）分泌具有時間依賴性，24 小時左右達到分泌平臺期，半小時差異不會導致分泌量大幅波動。若實驗室對結果穩定性要求極高（如 QC 放行檢測），建議嚴格按 24 小時操作，避免因時長差異引入誤差；若為預實驗（如樣品稀釋倍數摸索），±30 分鐘允差可接受，但需在記錄中注明實際培養時長。需注意的是，共培養時長不可超過 26 小時或短于 22 小時：過長會導致細胞活性下降（炎癥因子分泌減少），過短則未達分泌平臺期（檢測信號偏低），均可能導致熱原濃度低估。此外，培養環境需保持穩定（37℃、5% CO?），溫度波動會影響細胞代謝，間接導致共培養時長的實際效果偏離，因此需定期校準培養箱溫度，確保環境條件一致。

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標簽：熱原檢測宿主細胞殘留DNA檢測支原體檢測內毒素檢測宿主細胞蛋白（HCP）殘留檢測

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