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PG13宿主細胞蛋白(HCP)殘留檢測試劑盒

來源: 發布時間:2025-12-03

美國藥典 USP 通則 <1132.1>《質譜法測定生物藥中殘留宿主細胞蛋白》(Residual Host Cell Protein Measurement in Biopharmaceuticals by Mass Spectrometry),主要內容是介紹 LC-MS 技術在宿主細胞殘留蛋白檢測中的應用。該通則圍繞樣品制備、質譜測試條件建立、數據分析、質譜方法驗證等維度,詳細說明質譜技術應用于 HCPs 檢測的優勢及需注意的事項。作為先進的分析技術平臺,質譜技術在 HCPs 分析中的應用,無論是單獨使用,還是與 ELISA 及其他分析方法聯合使用,都能幫助生產企業在產品全生命周期中更清晰地理解并建立 HCPs 檢測方法,進而保障產品質量穩定。
總蛋白檢測差異是 HCP 免疫檢測結果不同的原因之一。PG13宿主細胞蛋白(HCP)殘留檢測試劑盒

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宿主細胞蛋白(HCP)殘留監測是生物藥物生產中的關鍵質量屬性(Critical Quality Attribute, CQA),需在藥物開發與生產階段對 HCP 的存在實施嚴格監控、管理及記錄。隨著生產流程推進,生物制品目標蛋白純度逐步提升,HCP 含量則相應持續下降,這導致對單抗、融合蛋白等富含目標蛋白的下游工藝樣品進行 HCP 分析監測時,難度明顯增加。在此背景下,高效的 HCP 富集材料與技術顯得尤為重要。SHENTEK®AbunProteoX 是基于磁珠構建的親和配體,能高效識別并結合目標蛋白;借助磁性納米顆粒的獨特特性,它可快速高效捕獲 HCP,大幅提升檢測靈敏度。此外,該親和配體的普遍適用性,讓 AbunProteoX 處理多種生物樣本時表現優異,可確保樣品中存在高濃度目標蛋白時,對低濃度 HCP 的質譜、電泳等檢測分析具備準確性與可靠性。
北京畢赤酵母宿主細胞蛋白(HCP)殘留檢測宿主細胞蛋白(HCP)殘留檢測對保障生物制品安全性和有效性至關重要。

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LC-MS/MS 作為成熟穩定的蛋白質組學分析技術,依托超高分辨率與準確度,在生物分析領域中占據關鍵地位。該技術不僅可對低含量宿主細胞殘留蛋白(HCP)開展定性檢測,還能通過構建專屬蛋白質譜庫準確鑒定 HCP 的具體種類,為深度解析殘留蛋白組成提供重要支撐。不過該技術應用中面臨的主要挑戰,是如何優化 LC-MS 方法以契合 GMP 規范對產品放行檢測的嚴苛要求。在質譜檢測環節,引入表征明確的內標與外標蛋白,可準確分析 HCPs 的整體組成,并有效識別其中具有潛在風險的高風險蛋白。這一技術手段不僅為開發產品專屬 HCP ELISA 檢測方法提供有力數據支撐,還可助力工藝優化升級,加快推進生物制品從研發到獲批上市的全流程進度。

法規推薦的抗體覆蓋率評估方法主要分為兩類:一類是傳統 2D-WB 法,另一類是基于抗體親和的免疫捕獲類方法。傳統 2D-WB 法存在諸多不足,如需對蛋白進行變性處理、樣品需前處理(會破壞蛋白天然表位)、轉膜效率較低、易出現非特異性反應等,因此難以準確反映真實的覆蓋率水平。湖州申科自主研發了免疫磁珠捕獲分離技術(immunomagnetic beads separation,IMBS),該技術借助免疫磁珠的半液態特性,能在懸浮狀態下與 HCP 樣本充分混勻并結合;整個過程中蛋白無需變性,且結合方式與 ELISA 檢測條件相近,從而可獲得更貼近真實情況的覆蓋率結果。
實驗過程質控的持續改進與評估,需結合方法間差異納入抗體覆蓋率分析框架。

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畢赤酵母(Pichia pastoris)作為第二代酵母表達系統的代表性菌株,已被美國 FDA 認定為 GRAS(一般認為安全)級微生物,具備表達水平高、產物活性優、培養成本低、易于擴大至工業化生產等優勢。在生物制藥領域,酶制劑、胰島素、表皮生長因子、膠原蛋白等多款生物制劑,已借助畢赤酵母系統實現商業化生產。和其他產品雜質類似,畢赤酵母宿主殘留蛋白(HCP)可能對生物制品的安全性與有效性造成不利影響,故而在生產監測、產品放行等環節中,需對其開展定量研究并實施嚴格控制。SHENTEK® 畢赤酵母 HCP 殘留檢測試劑盒(一步酶聯免疫吸附法),是湖州申科生物自主研發的畢赤酵母 HCP 通用檢測試劑盒,不僅擁有完全自主知識產權,還實現了關鍵試劑的全國產化。該試劑盒適用于對 GS115、X33 等畢赤酵母菌株生產的生物制品中宿主殘留蛋白進行定量檢測,具有操作步驟少、檢測速度快、專一性強、性能穩定可靠的特點。
通用型試劑盒為市售廣譜方案,使用前需嚴格評估抗體對特定 HCP 的覆蓋率。成都工藝特異型宿主細胞蛋白(HCP)殘留檢測免疫策略

宿主細胞蛋白殘留檢測試劑盒的開發不是一個簡單的過程,是一個對平臺、技術均有很高要求的整體流程。PG13宿主細胞蛋白(HCP)殘留檢測試劑盒

湖州申科運用免疫磁珠分離技術(IMBS),搭配 2D 電泳或 LC-MS 技術評估抗體覆蓋率。IMBS 的主要流程涵蓋:多克隆抗體與磁珠的偶聯反應、磁珠未結合位點的封閉處理、HCP 樣本與結合抗體的磁珠共同孵育反應。該過程中,HCP 抗體會結合可識別的 HCP,未被識別的 HCP 則通過后續洗滌步驟去除,隨后借助低 pH 等洗脫條件,收集抗體捕獲的 HCP。此方法具備 AAE(抗體親和提取,Antibody Affinity Extraction)免疫層析柱分離的全部優勢,同時免疫磁珠可在懸浮狀態下與 HCP 樣品充分混勻并結合,HCP 結合效果更優;且依托磁珠吸附,能減少 HCP 與填料的非特異性吸附,進一步提升實驗準確性。
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