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非動物源內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)

來源: 發布時間:2025-12-17

內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)與天然鱟試劑在原料、性能和可持續性上存在本質區別。原料方面,天然鱟試劑依賴鱟血采集,受動物資源限制,而 rCR 通過基因工程表達 C、B 因子及凝固酶原,無動物源性,供應穩定。特異性上,天然鱟試劑因含 G 因子,易與 β-D 葡聚糖反應產生假陽性,而 rCR 剔除 G 因子,對內毒素特異性響應,從機制上消除干擾。批間一致性方面,天然鱟試劑受鱟個體差異影響,批間 CV 值較高;rCR 成分明確且生產工藝標準化,批間差異明顯降低,CV 值≤15%。兩者靈敏度相當(0.005EU/mL),但 rCR 無需面臨鱟資源政策限制,更符合動物福利趨勢和長期質控需求,是天然鱟試劑的理想替代。
內毒素檢測的方法多樣性、多影響因素及實驗干擾,會導致自檢數據與廠家數據存在差異。非動物源內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)

非動物源內毒素檢測重組級聯試劑(rCR),內毒素檢測

湖州申科生物凝膠法鱟試劑憑借合規性和實用性,成為實驗室內毒素定量檢測的優先選擇。該產品嚴格符合 USP、EP、中國藥典標準,提供 0.03、0.06、0.125、0.25、0.5EU/mL 等多種靈敏度規格,適配不同樣品的限值要求。設計上采用大瓶裝量(10 反應 / 支),減少瓶間差異和頻繁開瓶導致的污染風險,降低單位測試成本。針對血源制品、中藥注射劑等復雜基質樣品,配套特異性抗增液(NND071)可高效抑制非特異性反應,減少假陽性結果。包裝選用易開啟西林瓶,避免操作時玻璃碎屑污染,提升使用安全性。憑借千家醫院的臨床使用經驗和穩定的性能表現,該產品更適合血源制品及復雜基質。
非動物源內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)內毒素檢測假陰性多因樣品抑制,梯度稀釋結合加標試驗可定位偏差原因。

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隨著動物保護理念和法規要求升級,重組因子C法(rFC法)作為 LAL 法的替代技術逐漸普及。重組 C 因子是以基因重組的方式表達的 LAL 試劑中的 C 因子,C 因子被內毒素活化后切割熒光底物產生游離熒光基團,通過檢測熒光信號可以反應活化后的蛋白酶活性,并由此可以推算出內毒素的含量。與傳統 LAL 法相比,rFC 法無需依賴鱟血資源,避免了天然 LAL 試劑批間差異大、易受 β- 葡聚糖干擾等問題,且反應特異性更強。目前,《美國藥典》、《歐洲藥典》等法規已收錄 rFC 法,歐盟更推薦其用于疫苗等高風險產品檢測,在保證檢測準確性的同時,符合動物福利和可持續發展要求。

如何準備樣品進行內毒素檢測呢?測試前,需要根據樣品實際情況進行樣本前處理。大多數樣品只需要稀釋,使用內毒素檢測試劑盒進行測試即可。如果樣品有蛋白酶干擾并導致假陽性結果,建議對樣品稀釋并70°C加熱5-15分鐘進行熱滅活處理。如需要,可以對滅活樣品進行進一步稀釋后檢測。如果樣品可能含有受β-葡聚糖,建議使用抗增液。β-葡聚糖可能來自酵母和纖維素材料。如果樣品中因含有內毒素結合物而存在抑制,可以嘗試使用分散劑。
鱟試劑靈敏度復核至關重要,存放半年需重測,避免內毒素檢測出現假陰性或假陽性。

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低內毒素回收(LER)與傳統鱟試劑干擾(抑制 / 增強)在多維度存在差異,準確區分對優化內毒素檢測至關重要。表現上,LER 是內毒素回收率<50%,傳統干擾是反應抑制或增強;成因上,LER 由螯合劑 + 表面活性劑協同或蛋白質電荷結合引發,傳統干擾因 pH、β- 葡聚糖等導致;排除方式上,LER 時間依賴且無法稀釋解決,傳統干擾濃度依賴且可通過稀釋緩解;確認方法上,LER 需通過保存時間研究(HTS),傳統干擾按藥典干擾實驗評估。明確這些區別能幫助企業排查內毒素檢測異常,避免誤將 LER 當作普通干擾處理。
內毒素檢測復孔 CV>15%,需校準移液槍,規范加樣,排查耗材污染。內毒素檢測結果判定

表面活性劑會改變內毒素活性,用重組級聯試劑檢測前需稀釋樣本,消除其對反應的干擾。非動物源內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)

內毒素檢測的實驗方案需遵循“標曲可靠性驗證(靈敏度復核)-稀釋倍數計算-干擾試驗”的完整流程,以保障檢測結果準確合規。首先進行標曲可靠性試驗,用標準內毒素制備至少3個濃度的稀釋液(相鄰濃度間稀釋倍數不超過10,下限濃度不低于鱟試劑標示檢測限),每濃度設 3 支平行管,同時做2支陰性對照;當陰性對照的吸光度小于或透光率大于標準曲線下限的檢測值或反應時間大于標準曲線下限的反應時間,對數據進行線性回歸,相關系數r的幅值≥0.980時試驗方有效,否則需重新操作。接著按公式 L=K/M 確定樣本內毒素限值,K 值依給藥途徑而定,M結合人均60kg體重、1.62m2 體表面積及上限給藥劑量計算,也可參考藥典行標。隨后明確有效稀釋上限倍數(MVD),即供試品允許稀釋的上限倍數,確保在此范圍內檢測限值。開展樣本干擾試驗,制備供試品溶液(A)、供試品加標溶液(B,加標濃度為標曲中點)、標準曲線溶液(C)及陰性對照(D),按公式 R=(Cs-Ct)/λm×100%計算加標回收率,50%-200%為合格;若鱟試劑、生產工藝等發生變化,需重新進行干擾試驗,保障內毒素檢測的可靠性。
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