革蘭氏陽性菌注射劑產品只依賴內毒素檢測存在安全風險,需結合熱原檢測特性制定防控方案。內毒素是革蘭氏陰性菌細胞壁的脂多糖成分,而革蘭氏陽性菌可產生非內毒素熱原(NEPs),如脂磷壁酸,這類物質同樣能引發人體發熱反應,若只檢測內毒素,可能遺漏 NEPs 污染,導致臨床用藥風險。對此,風險評估需重點關注三點:一是建議開展家兔法與內毒素檢測的一致性實驗,對比兩種方法的檢測結果,排查是否存在內毒素未檢出但家兔法陽性的情況;二是采用 MAT 法熱原檢測,其通過單核細胞活化機制,可同時識別內毒素與 NEPs,若 MAT 法檢測陽性,需進一步追溯 NEPs 來源;三是若無法排除 NEPs 風險,必須按藥典...
MAT法熱原檢測中,ELISA 加終止液后的讀數時間需嚴格控制,以保障 IL-6 檢測信號穩定。湖州申科生物MAT試劑盒說明書明確要求,終止液添加后需在 10 分鐘內完成讀數,且需避光操作 —— 原因在于,終止液(如硫酸)會終止 TMB 顯色反應,但生成的黃色產物在光照下易降解,超過 10 分鐘后 OD 值會下降,導致 IL-6 檢測值偏低。讀數前需進行 30 秒震蕩混勻,確保孔內液體濃度均勻,避免因局部濃度差異導致復孔 OD 值波動。酶標儀波長需設置為 450nm,若儀器含 600nm 參考波長,可同時檢測 600nm 波長以扣除背景干擾(如細胞碎片導致的光散射),提升檢測準確性。需注意...
MAT 法熱原檢測的關鍵機制是 “熱原活化單核細胞 TLR 受體,觸發炎癥因子分泌”,TLR 受體的全覆蓋是保障檢測無遺漏的關鍵。不同熱原需活化不同 TLR 受體:最常見的內毒素(LPS)主要活化 TLR4,而革蘭氏陽性菌的非內毒素熱原(如脂磷壁酸)需活化 TLR2/6,真菌多糖活化?TLR2/4,病毒核酸活化 TLR3/7/8 等。因此,MAT 試劑盒配套細胞需具備全覆蓋的 TLR 受體表達—湖州申科生物通過 Western blot 驗證,其 HL-60 細胞系表達 TLR1-TLR9,可響應各類熱原。為進一步驗證覆蓋能力,申科用不同非內毒素熱原配體(如脂磷壁酸、酵母多糖)刺激細胞,結...
熱原檢測MAT法的法規地位持續提升,已成為多國藥典認可的熱原檢測替代方法。歐洲藥典(EP)是推動 MAT 應用的關鍵力量:通則 2.6.30 明確 MAT 可替代家兔熱原試驗(RPT),且能同時檢測內毒素與非內毒素熱原;2024 年歐洲藥典委員會批準刪除所有條款中的家兔法,修訂文本將于 2025 年7月1日生效,強制鼓勵使用 MAT 等體外替代方法。美國藥典(USP)<151> 規定,經驗證的體外熱原試驗(如 MAT)可替代家兔法,且需依據 USP<1225>開展驗證;FDA 行業指南進一步明確 MAT 的合規性。中國藥典 2020 年版通則 9301 將 MAT 列為熱原檢查的補充方法,...
熱原是能引發恒溫動物體溫異常升高的物質總稱,主要成分為細菌內毒素(革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS),同時涵蓋病毒、真菌毒素、支原體等非內毒素熱原,其檢測是保障藥品與醫療器械安全性的關鍵環節。當前熱原檢測已形成 “特異性檢測 + 廣譜篩查” 互補的完整體系:以鱟試驗法(含天然 LAL 與重組 rCR/rFC 試劑)作為細菌內毒素的特異性檢測手段,憑借 fg 級靈敏度成為制藥行業常規質控方法,可通過凝膠法實現定性、動態濁度 / 顯色法完成定量;以家兔熱原試驗作為傳統廣譜篩查方法,雖操作繁瑣(需預試篩選基礎體溫穩定家兔,正式試驗觀察 3 小時體溫變化),但仍是放射性質的藥物、血液制品等高風險產品排除...
熱原檢測技術自 20 世紀初問世以來,經歷了 “動物試驗→體外生化檢測→細胞生物學檢測” 的三次關鍵變革,每一次變革均推動檢測效率、準確性與全面性的提升。20 世紀初至中期,熱原檢測方法只有家兔熱原試驗,通過觀察家兔體溫變化篩查熱原,雖實現了廣譜檢測,但存在動物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限,難以滿足制藥行業快速發展需求。20 世紀 60 年代,鱟試驗法(LAL 法)的發明開啟了熱原檢測的 “體外生化時代”,利用鱟血變形細胞裂解物的凝血級聯反應檢測細菌內毒素,靈敏度提升至 ng 級,檢測時間縮短至 1-2 小時,迅速成為制藥行業常規質控方法;但該方法依賴鱟資源,易受 β- 葡...
熱原是指微量即可引發恒溫動物體溫異常升高的物質,分為內源性(如細胞因子)與外源性兩類,外源性熱原又涵蓋微生物來源(革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS、革蘭氏陽性菌脂磷壁酸 LTA、病毒、真菌等)與非微生物來源(灰塵、橡膠降解產物等)。傳統細菌內毒素檢查法(BET)只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS,無法覆蓋非內毒素熱原,而單核細胞活化試驗(MAT)可彌補這一缺陷。其原理是:熱原通過活化單核細胞表面的 Toll 樣受體(TLR,如 TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA),啟動先天免疫反應,促使細胞釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細胞因子;隨后采用 ELISA 法檢測 IL-6 濃度...
含消除炎癥成分的樣品可能抑制 IL-6 產生,需通過科學評估排除干擾,確保 MAT 法熱原檢測結果準確。根據藥典要求,若樣品能抑制單核細胞促炎癥因子釋放,需通過以下步驟驗證適用性:首先,選擇樣品 A、2A、4A 倍稀釋(均不超過上限有效稀釋倍數 MVD),避免高濃度消除炎癥成分過度抑制;其次,進行供試品加標回收率實驗,若回收率在 50%-200% 的合格范圍,說明消除炎癥成分未影響熱原檢測;再對比 “供試品配制的標曲” 與 “稀釋液配制的標曲”,若兩者 IL-6 檢測值相差在 ±20% 以內,表明樣品基質對檢測無系統性干擾。例如,某消除炎癥單抗樣品經 2 倍稀釋后,加標回收率達 120%,...
MAT 法熱原檢測的關鍵機制是 “熱原活化單核細胞 TLR 受體,觸發炎癥因子分泌”,TLR 受體的全覆蓋是保障檢測無遺漏的關鍵。不同熱原需活化不同 TLR 受體:最常見的內毒素(LPS)主要活化 TLR4,而革蘭氏陽性菌的非內毒素熱原(如脂磷壁酸)需活化 TLR2/6,真菌多糖活化?TLR2/4,病毒核酸活化 TLR3/7/8 等。因此,MAT 試劑盒配套細胞需具備全覆蓋的 TLR 受體表達—湖州申科生物通過 Western blot 驗證,其 HL-60 細胞系表達 TLR1-TLR9,可響應各類熱原。為進一步驗證覆蓋能力,申科用不同非內毒素熱原配體(如脂磷壁酸、酵母多糖)刺激細胞,結...
MAT 試劑盒配套的即用型細胞存在明確的傳代限制,且商業化傳代需獲得授權,關鍵是保障細胞質量與檢測可靠性。首先,即用型細胞經特殊工藝優化,已處于較好的活性與熱原響應狀態,不適合傳代,傳代后細胞會出現 TLR 受體表達下降、炎癥因子分泌減少等問題,導致熱原檢測靈敏度降低,如 HL-60 細胞傳代超過 5 代后,IL-6 分泌量下降 30%,無法滿足檢測要求。其次,若用戶需將即用型細胞用于商業化生產(如大規模檢測),需獲得湖州申科授權,包括用戶資質審核、技術培訓、傳代方案驗證,確保用戶具備細胞培養與質量控制能力,避免未經授權傳代導致細胞特性改變,影響檢測結果一致性。此外,參考文獻數據,即使是可...
湖州申科生物熱原檢測試劑盒(MAT 法,貨號 1502100)包含完整的檢測體系,組分按功能可分為細胞培養類、ELISA 檢測類與輔助類,且儲存條件明確。細胞培養類組分包括:2-8℃儲存的培養液(25mL×2 瓶)、96 孔細胞孵育板,-18℃儲存的培養液添加劑(1.5mL×1 管)、細菌內毒素工作標準品,以及需液氮保存的 MAT 細胞(2 支),確保細胞活性與穩定性。ELISA 檢測類組分涵蓋:2-8℃儲存的生物素偶聯抗 IL-6 抗體(200×,60μL)、鏈霉親和素 HRP 復合物(100×,140μL)、TMB 顯色液(12mL)、終止液(6mL),以及抗 IL-6 預包被酶標板(...
在 MAT 法熱原檢測中,PBMC(外周血單核細胞)與單核細胞系各有優劣,單核細胞系更適合標準化檢測。PBMC 的優勢在于免疫細胞成分豐富(含單核細胞、淋巴細胞等),對熱原反應敏感,靈敏度相對較高;但局限同樣明顯 ——PBMC 需從不同供體獲取,供體免疫狀態差異會導致檢測結果不穩定,且無法長期保存,難以建立標準化方法學。單核細胞系(如 HL-60、MM6、THP1)則克服了 PBMC 的局限:細胞來源穩定(可批量培養),TLR 受體表達覆蓋主要亞型(如 HL-60 表達 TLR1-TLR9),對熱原反應重復性好,更適合商業化試劑盒與法規檢測。不同單核細胞系性能也有差異:MM6/IL-6 法...
PyroSHENTEK?熱原檢測試劑盒突破傳統檢測方法局限,不僅能檢測革蘭氏陰性菌來源的內毒素,還可準確識別革蘭氏陽性菌(脂磷壁酸 LTA)、病毒、真菌等產生的非內毒素熱原(NEP),契合熱原檢測 “全風險覆蓋” 的法規需求。其定量限低至 0.025EU/mL,實驗數據顯示,對 Flagellin、LTA、Resiquimod、Poly-IC 等多種 NEP 均能有效檢出,且加標回收率穩定在 50%-200% 合格范圍(如貝伐珠單抗注射液中 LTA 加標回收率 66.8%、Zysoman 加標回收率 113%)。此外,試劑盒聯合了國內相關機構完成室間驗證,與傳統家兔熱原試驗(RPT)橋接結...
MAT法熱原檢測中,樣品與細胞共培養時長需嚴格控制,以保障炎癥因子分泌量穩定。說明書要求共培養 24 小時,雖未明確允差,但實驗驗證顯示,±30 分鐘的允差對結果無明顯影響 —— 細胞因子(如 IL-6)分泌具有時間依賴性,24 小時左右達到分泌平臺期,半小時差異不會導致分泌量大幅波動。若實驗室對結果穩定性要求極高(如 QC 放行檢測),建議嚴格按 24 小時操作,避免因時長差異引入誤差;若為預實驗(如樣品稀釋倍數摸索),±30 分鐘允差可接受,但需在記錄中注明實際培養時長。需注意的是,共培養時長不可超過 26 小時或短于 22 小時:過長會導致細胞活性下降(炎癥因子分泌減少),過短則未達...
MAT 法熱原檢測中,細胞傳代的代次控制是保障檢測穩定性的關鍵,需結合細胞特性與文獻數據制定標準。參考行業文獻,單核細胞系(如 HL-60、THP1)的使用代次通常不超過 20 代,代次過高會導致細胞生物學特性改變:一是 TLR 受體表達下降,如 TLR4 表達量在 20 代后下降 40%,導致內毒素檢測靈敏度降低;二是細胞倍增時間延長,從 24 小時延長至 36 小時,影響共培養時長的準確性;三是炎癥因子分泌減少,IL-6 分泌量在 20 代后下降 35%,導致熱原濃度低估。申科對配套的 HL-60 細胞系進行代次穩定性驗證,結果顯示:1-15 代細胞的熱原響應性一致(加標回收率 85%...
MAT法熱原檢測中,ELISA 加終止液后的讀數時間需嚴格控制,以保障 IL-6 檢測信號穩定。湖州申科生物MAT試劑盒說明書明確要求,終止液添加后需在 10 分鐘內完成讀數,且需避光操作 —— 原因在于,終止液(如硫酸)會終止 TMB 顯色反應,但生成的黃色產物在光照下易降解,超過 10 分鐘后 OD 值會下降,導致 IL-6 檢測值偏低。讀數前需進行 30 秒震蕩混勻,確保孔內液體濃度均勻,避免因局部濃度差異導致復孔 OD 值波動。酶標儀波長需設置為 450nm,若儀器含 600nm 參考波長,可同時檢測 600nm 波長以扣除背景干擾(如細胞碎片導致的光散射),提升檢測準確性。需注意...
MAT法(單核細胞活化反應測定)熱原檢測基于人體免疫反應機制設計,原理是:內毒素(革蘭氏陰性菌來源)與非內毒素熱原(革蘭氏陽性菌、霉菌、病毒等來源)進入人體后,會活化單核細胞或單核細胞系,使其釋放 IL-6、IL-1、IL-1β、TNF-α 等促炎細胞因子。檢測時將供試品與單核細胞 / 單核細胞系共孵育,再通過 ELISA 定量檢測釋放的 IL-6 含量,結合內毒素標準品繪制的標曲,即可判斷供試品中熱原含量是否符合規定,實現內毒素與非內毒素熱原的全覆蓋檢測。 MAT 熱原檢測中細胞活性影響巨大,活率需達一定標準保證檢測效果。湖南合規性熱原檢測 MAT 法熱原檢測的關鍵機制是 “熱原活化單...
MAT法熱原檢測中,非內毒素熱原(NEP)對照品設為 “選做”,且試劑盒不默認配備,需結合檢測需求靈活使用,背后有明確的設置邏輯。首先,試劑盒開發階段已通過驗證(用多種 NEP 配體刺激細胞),證明其可檢出 NEP,后期實驗是否加入 NEP 對照,只需根據內部管理要求或專業人員建議確定,無需強制設置;若產品產線明確無 NEP 污染風險(如只使用革蘭氏陰性菌原料),可刪除 NEP 對照,簡化操作。其次,試劑盒不配備 NEP 對照品,是因不同用戶需求差異大 —— 部分用戶需檢測特定 NEP(如脂磷壁酸),部分需檢測廣譜 NEP,因此提供單獨購買選項,用戶可按需選擇,避免資源浪費。NEP 對照品...
MAT 法熱原檢測標曲采用非倍比稀釋,而非 1-0.5-0.25 的倍比稀釋,主要優勢在于提升標曲準確性與適用性,避免稀釋誤差影響。一是可密集覆蓋關鍵濃度區間:熱原檢測的重點關注區為低濃度拐點(如 0.0125-0.1EU/mL)與高濃度平臺區(如 0.5-1EU/mL),非倍比稀釋可在這些區間設置更多濃度點(如 0.0125、0.025、0.05、0.1、0.25、0.5、1EU/mL),提升曲線擬合精度,而倍比稀釋低濃度點少,易導致低濃度熱原定量不準。二是降低稀釋誤差累積:倍比稀釋需連續稀釋(如 1EU/mL→0.5EU/mL→0.25EU/mL),每一步誤差會累積,導致低濃度點實際濃...
熱原是指微量即可引發恒溫動物體溫異常升高的物質,分為內源性(如細胞因子)與外源性兩類,外源性熱原又涵蓋微生物來源(革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS、革蘭氏陽性菌脂磷壁酸 LTA、病毒、真菌等)與非微生物來源(灰塵、橡膠降解產物等)。傳統細菌內毒素檢查法(BET)只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS,無法覆蓋非內毒素熱原,而單核細胞活化試驗(MAT)可彌補這一缺陷。其原理是:熱原通過活化單核細胞表面的 Toll 樣受體(TLR,如 TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA),啟動先天免疫反應,促使細胞釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細胞因子;隨后采用 ELISA 法檢測 IL-6 濃度...
PBMC(外周血單個核細胞)用于 MAT 熱原檢測時,存在異質性與血源供應兩大關鍵問題。從異質性來看,PBMC 含 12% 單核細胞與 88% 淋巴細胞,且來自不同供體,細胞組成、功能狀態及熱原反應存在明顯差異,導致熱原刺激后 IL-6 釋放量波動大,標準化難度高。血源供應方面,除受獻血者數量、時間及采集血液政策限制外,EP2.6.30 還要求嚴格檢測乙肝、丙肝等標志物,且采集血液、處理、試劑制備全程需無菌操作,流程環節多、復雜度高,遠不及單核細胞系制備簡便,易影響熱原檢測的時效性與穩定性。家兔法是熱原檢測 “金標準”,但操作繁瑣、耗時且需動物設施,存在明顯局限。北京抗體藥物熱原檢測MAT法 ...
MAT 試劑盒熱原檢測配套細胞的質量控制,是保障檢測結果可靠的重要環節,需從功能、安全性、穩定性三方面建立體系。在功能鑒定上,按歐洲 MAT 法要求,需檢測細胞的 Toll 樣受體(TLR1-TLR9)表達情況—確保細胞能響應不同類型熱原(如 TLR4 響應 LPS、TLR2/6 響應脂磷壁酸);同時考察細胞倍增時間(確保活性穩定)、熱原反應性(對標準內毒素和非內毒素熱原的信號強度),確保細胞具備熱原識別與炎癥因子分泌能力。在安全性檢測上,需驗證細胞無菌(無細菌、真菌污染)、無支原體、無外源病毒因子(如 HIV、HBV)及分枝桿菌,避免外源污染影響檢測結果。在穩定性考察上,需監測不同代次細...
MAT法熱原檢測特定標準品與傳統細菌內毒素國家標準品存在本質差異,需明確區分以保障檢測準確性。MAT 特定標準品為大腸桿菌(E.coli 0113:H10:K)菌株制備,經全國 5 家藥品檢驗所(含中檢院)用凝膠法、動態濁度法及動態顯色法協作標定,溯源至國際標準品,可同時檢測內毒素與非內毒素熱原;而傳統細菌內毒素國家標準品(如 9000EU 規格)源自大腸桿菌(E.coli O111:B4),只適用于內毒素檢測,無法識別非內毒素熱原。關鍵驗證數據顯示,用 MAT法檢測 9000EU 內毒素標準品時,加標回收率不在 50%-200% 的合格范圍,因此不能替代 MAT 特定標準品。值得注意的是...
PBMC(外周血單個核細胞)的供體差異會直接導致熱原檢測結果的波動,主要體現在 IL-6 釋放水平的不一致。不同供體的 PBMC,其單核細胞比例、TLR 受體表達量、免疫活性狀態存在差異:有的供體 PBMC 受熱原刺激后, IL-6 釋放量高;有的則極低,甚至無明顯響應。實驗數據顯示, PBMC 的標曲各濃度點相對偏差有高達 171.43%的,正是這種差異的體現,導致熱原檢測結果難以標準化,無法準確判斷供試品熱原是否超標,從而增加了藥品的質量控制風險。 湖州申科熱原檢測試劑盒聯合了國內相關機構室間驗證,與傳統RPT法結果高度一致,符合法規要求。生物制品熱原檢測結果判定 熱原是能引發恒溫動...
MAT 法熱原檢測背景值偏高會干擾結果判讀,需從試劑、操作兩方面解決。試劑相關問題中,非特異性活化(如試劑含微量熱原)會導致細胞異常分泌 IL-6,需選用低內毒素的試劑與耗材;檢測試劑添加過多(如抗體濃度過高)會增加非特異性結合,需按說明書稀釋試劑或降低推薦濃度。操作環節問題更多見:孔洗滌不充分會殘留未結合抗體與酶,需按方案完成規定洗滌次數(如 3-5 次),確保洗滌液充分浸潤孔底;洗滌緩沖液污染(如滋生微生物)會引入外源信號,需現配現用緩沖液;加終止液后讀板延遲(超 10 分鐘),會因黃色產物降解導致背景虛高,需加終止液后立即讀板;底物孵育時見光會引發非特異性顯色,需在避光環境下進行 T...
湖州申科生物熱原檢測(MAT法) 試劑盒在靈敏度、穩定性與適用性上表現突出,關鍵性能參數符合藥典要求:標曲線性范圍 0.0125-1.0EU/mL,相關系數 R2≥0.98,定量限 0.025EU/mL,檢測限(LOD)0.0125EU/mL,批間精密度 CV≤25%,可準確捕捉微量熱原。其優勢在于特定的單核細胞系 —— 與依賴供體血液的 PBMC 細胞不同,申科 MAT 細胞系來源清晰可溯源,無需倫理審批與血站合作,規避供體差異導致的檢測波動。對比同類型產品(如國外廠家 PBMC 細胞),申科細胞系的標曲各濃度點 CV 更低( 低至3.6%)、相對偏差更小( 12.31%),線性 R2 ...
MAT 試劑盒熱原檢測配套細胞的質量控制,是保障檢測結果可靠的重要環節,需從功能、安全性、穩定性三方面建立體系。在功能鑒定上,按歐洲 MAT 法要求,需檢測細胞的 Toll 樣受體(TLR1-TLR9)表達情況—確保細胞能響應不同類型熱原(如 TLR4 響應 LPS、TLR2/6 響應脂磷壁酸);同時考察細胞倍增時間(確保活性穩定)、熱原反應性(對標準內毒素和非內毒素熱原的信號強度),確保細胞具備熱原識別與炎癥因子分泌能力。在安全性檢測上,需驗證細胞無菌(無細菌、真菌污染)、無支原體、無外源病毒因子(如 HIV、HBV)及分枝桿菌,避免外源污染影響檢測結果。在穩定性考察上,需監測不同代次細...
湖州申科生物MAT試劑盒配套的即用型細胞,需嚴格遵循解凍與使用規范,避免細胞活性下降影響熱原檢測結果。首先,解凍操作需快速:從液氮罐或 - 80℃冰箱取出細胞后,立即放入 37℃水浴鍋快速解凍(約 1-2 分鐘),避免緩慢解凍導致細胞內形成冰晶,損傷細胞膜;解凍后需立即取出,用 75% 酒精擦拭管外壁消毒,防止污染。其次,細胞解凍后需一次性使用完畢,不建議按量添加培養基或添加劑后分次使用—即用型細胞經工藝優化,活性與濃度已預調,分次使用會導致細胞狀態不均(如部分細胞活化、部分休眠),影響熱原反應性。使用時需嚴格按說明書操作:將解凍后的細胞直接加入含樣品的微孔板中,無需額外洗滌或稀釋,若樣品...
單核細胞活化反應測定(MAT)是近年來熱原檢測領域的突破性技術,其原理基于人體免疫系統對熱原的天然應答機制:人源單核細胞(如 THP-1 細胞系或新鮮人全血單核細胞)在熱原刺激下,會活化胞內炎癥信號通路,釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細胞因子,通過 ELISA 檢測細胞因子的濃度,即可間接反映樣品中熱原的總量與活性。與傳統檢測方法相比,MAT 法具備三大不可替代的優勢:一是廣譜性,可同時檢測細菌內毒素、病毒、真菌毒素、支原體等所有類型熱原,填補了鱟試驗法只能檢測內毒素的 “非內毒素熱原盲區”,尤其適用于疫苗、基因治療產品等易受多種熱原污染的高風險產品;二是人源相關性,采用與人體同源的細...
單核細胞系培養的高度可控性,為熱原檢測結果的可靠性提供關鍵保障。其培養基配方(如營養成分、血清濃度)可定制,確保細胞獲取充足營養;培養環境(37℃、5% CO?、濕度≥90%)可恒定控制,維持細胞好的活性與 TLR 受體表達水平,避免因環境波動導致細胞功能異常。這種可控性還能防止細胞遺傳突變與外源污染(如支原體、病毒),確保不同批次單核細胞系的熱原響應一致性,讓熱原檢測結果批間差異小,符合 GMP 對檢測方法穩定性的要求。 單核細胞活化試驗(MAT)將熱原檢測從經驗性觀察,推進至受體-配體相互作用的分子本質。安徽熱原檢測常見問題分析 MAT法熱原檢測中,樣品與細胞共培養時長需嚴格控制,以...